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elisa实验:常见问题及分析
ELISA实验常见问题及分析
1. 背景颜色深/非特异性染色
原因:洗涤不充分、试剂污染、孵育时间过长或抗体浓度过高。
解决方法:确保洗涤液注满微孔且无残留,更换吸头避免交叉污染,严格按说明书控制孵育和显色时间。
2. 所有孔均无明显颜色
原因:试剂混淆、酶标物失活或步骤遗漏。
解决方法:检查试剂标签,确认无遗漏步骤,使用新鲜蒸馏水配制缓冲液,确保试剂室温平衡30分钟。
3. 假阳性,背景高甚至花板
原因:加样时污染、温育箱温度过高、操作时间过长导致反应时间不同、洗板不充分。
解决方法:更换枪头避免污染,控制温育箱温度在37±0.5℃,在尽可能短的时间内完成操作,避免堆积板子。
4. 重复性不好
原因:加样量不一、操作时间不一致、操作人员不同、标本处理不同。
解决方法:确保加样量与时间一致,使用同一名操作人员,模拟相同的反应条件。
5. 标准曲线不佳
可能原因:倍比标准品时未充分混匀、标准品溶液配置有误或标准品已降解。
解决方法:使用校准过的移液器,快速、等量分配标准品,确认稀释正确,并按推荐方式保存和处理标准品。
6. 样本无检测信号
可能原因:样本中无检测物或检测物含量极低、样本中其他物质影响/掩盖检测、样本中检测物浓度过高,Hook效应导致假低值。
解决方法:设置内参,重新实验,对样本进行适当稀释,降低其他物质的干扰。
7. 阴性对照出现阳性结果
可能原因:试剂/样品污染、夹心ELISA-检测抗体与包被抗体反应、酶标板洗板不净。
解决方法:使用新鲜试剂,小心操作移液器,确定使用的是正确的包被抗体和检测抗体。
8. 酶标板整体背景高
可能原因:结合反应太强或时间过长、底物溶液或终止液不是新鲜配制的、没有终止反应。
解决方法:检查底物的稀释,使用建议的稀释度,当酶标仪显色足够进行吸光度读取是立即用终止液终止反应。
9. 吸光度数值低
可能原因:使用的样品中没有显示靶蛋白或者靶蛋白显示的水平低、抗体不足。
解决方法:检查靶蛋白表达系统,确保它在您的样品中被表达出来,确定使用的是建议的抗体量。
10. 吸光值高
可能原因:样品和/或阳性对照吸光度数高,吸光度没有按样品在板上的稀释梯度递减。
解决方法:样品或阳性对照的浓度过高,超出了实验方法检测的范围,重新设置实验方法或者在加样前稀释降低样品和对照的浓度。
11. 满板白,阳性对照不显色
可能原因:把终止液误当作酶结合物或底物使用、漏加或错加试剂。
解决方法:严格按说明书操作,加液时看准标签,换用合格的蒸馏水或去离子水。
12. 满板显色
可能原因:读板前停留时间过长、加显色剂后在温育时受强光或紫外线照射。
解决方法:加终止液后10分钟内测定结果,应保存在暗处,避光。
注:以上仅供参考,本试剂仅供科研使用,不作为实际数据,实验需严格遵循说明或咨询技术老师。
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