PCR反应实验步骤及反应扩增问题情况分析

一、PCR反应完整实验步骤

试剂准备‌

所有试剂提前解冻，全程冰上操作，低速离心后使用。

按体系比例依次加入水、缓冲液、dNTPs、引物、模板DNA和Taq酶，常规体系为20-50微升。

分区操作，先在试剂区加完除模板外的组分，再移至模板区加入DNA，避免交叉污染。

温度循环设置‌

预变性：94-98℃加热1-5分钟，让模板DNA双链充分解开。

循环扩增：重复25-40个循环，每轮依次为95℃变性30秒、50-65℃退火30秒、72℃延伸1分钟。

终延伸：最后72℃保温5-10分钟，确保所有扩增产物合成完整，结束后4℃暂存。

产物检测‌

配制1%左右的琼脂糖凝胶，将扩增产物与DNA Marker依次点样，120V电泳30分钟。

紫外成像仪下观察条带，判断是否得到目标大小的扩增片段。

二、常见扩增问题情况分析

无扩增条带‌

模板问题：模板中杂蛋白残留、核酸降解或浓度过高/过低，需重新纯化模板并调整用量。

试剂问题：Taq酶失活、引物降解或dNTPs失效，更换新批次试剂重新配制体系。

程序问题：预变性不充分、退火温度过高导致引物无法结合，适当延长预变性时间、降低退火温度。

非特异性扩增/条带杂‌

引物问题：引物设计不合理、存在非特异性互补序列，重新设计引物并优化浓度。

程序问题：退火温度过低、循环次数过多，适当提高退火温度、减少2-3个循环。

体系问题：酶用量过大，按说明书减半调整酶的加入量。

出现引物二聚体‌

引物浓度过高，将上下游引物终浓度调整至0.1-0.3μM。

引物之间存在互补序列，重新设计引物避免3'端互补配对。

可使用热启动Taq酶，减少低温下引物的非特异性结合。

循环次数过多导致产物过量降解，减少循环次数。

电泳条件不合适，调整电泳电压不超过150V，控制电泳时间。

注：以上科研产品资料仅供参考！

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