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荧光定量PCR试剂盒在实验关键步骤及注意事项
以下是荧光定量PCR(qPCR)试剂盒实验的关键步骤及注意事项,天津本生结合操作规范与常见问题解决方案:
一、实验前准备
试剂与耗材
使用无RNase/DNase的枪头、EP管,避免RNA降解。
试剂盒组分需提前平衡至室温(20-25℃),避免温度波动影响反应效率。
样本处理
RNA提取后需检测浓度(A260/A280=1.8-2.0)及完整性(RIN≥7)。
反转录cDNA时需设置无模板对照(NTC)和基因组DNA去除步骤。
二、反应体系配置
加样顺序
推荐先配制主反应混合液(含酶、dNTPs、缓冲液等),再分装至各孔,最后加入模板。
加样误差需<5%,避免交叉污染(如使用排枪或自动化工作站)。
关键参数
引物终浓度通常为0.1-1μM,需通过梯度实验优化。
SYBR Green法需设置熔解曲线分析引物二聚体。
三、仪器操作
程序设置
三步法程序:95℃预变性10分钟→(95℃ 15秒→60℃ 30秒→72℃ 30秒)×40循环。
荧光信号采集需设置在退火/延伸阶段(SYBR Green法)或探针结合阶段(TaqMan法)。
数据采集
基线范围设为3-15循环,阈值设为指数期荧光信号10倍标准差。
四、常见问题与解决
问题 可能原因 解决方案
扩增曲线断裂 气泡干扰或模板浓度过高 瞬离去除气泡,稀释模板
无扩增信号 引物降解或反应条件不匹配 重新设计引物,优化退火温度
熔解曲线多峰 引物二聚体或非特异扩增 重新设计引物或提高退火温度
注:不同品牌试剂盒参数可能差异较大,建议以实际说明书为准。
注:仅供科研使用,以上资料供参考,如需具体产品说明请咨询技术老师或品牌供应商。
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