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加入酶标记检测抗体的核心注意事项
更新时间:2025-12-04浏览:11次

    加入酶标记检测抗体的核心注意事项

    使用酶标记检测抗体(常见的是酶标二抗)是ELISA、WesternBlot、免疫组化等实验中的关键步骤。以下是需要重点关注的方面,分为实验前、实验中、实验后三个阶段。

    一、实验前准备:抗体选择与保存

    特异性是关键

    宿主来源:确保检测抗体(二抗)所针对的宿主物种与一抗的宿主物种匹配。例如,小鼠来源的一抗应选择抗小鼠的酶标二抗。

    免疫球蛋白类型:确认一抗的亚型(如IgG,IgM),并选择针对该亚型的二抗,以获得信号。

    交叉吸附:在进行多重检测或样本含有多种物种蛋白时,应选择经过交叉吸附的二抗,以减少非特异性结合。

    酶与底物系统的选择

    HRP(辣根过氧化物酶):

    优点:成本低、灵敏度高、底物多样(如TMB,DAB)。

    注意事项:严禁使用含叠氮钠(NaN₃)的缓冲液,因为NaN₃是HRP的抑制剂。同时,要避免溶液被微生物污染。某些还原剂(如DTT)也会使其失活。

    AP(碱性磷酸酶):

    优点:稳定性好,不受NaN₃影响。

    注意事项:应避免使用含有磷酸根离子的缓冲液(如PBS),因为磷酸根是AP的竞争性抑制剂。推荐使用Tris缓冲液。

    抗体的保存与稀释

    正确保存:严格按照说明书要求保存,通常是-20℃分装冻存,避免反复冻融。

    使用前离心:短暂离心小管,将液体收集至管底,避免损失和起泡。

    优化稀释比例:必须进行预实验来优化二抗的稀释比例。说明书提供的范围是一个参考起点。浓度过高会导致背景深,浓度过低则信号弱。

    二、实验过程中:孵育与洗涤

    封闭要充分

    在加入检测抗体前,必须用惰性蛋白(如BSA、脱脂奶粉、血清等)对膜或板进行充分封闭,以封堵非特异性结合位点,这是降低背景的关键。

    孵育条件优化

    温度与时间:室温孵育1小时或4℃过夜。4℃过夜通常结合更牢固,背景更低,但需要更长时间。室温孵育更快捷,但需注意控制时间和温度,避免背景过高。

    避光:如果酶标抗体偶联了荧光染料,整个孵育过程需避光。

    均匀孵育:确保抗体溶液能均匀覆盖整个样本,放在摇床缓慢摇动孵育效果更佳。

    洗涤至关重要

    洗涤:孵育后,必须使用洗涤缓冲液(如TBST、PBST)进行充分且严格的洗涤,以去除未结合的游离抗体。这是降低背景有效的一步。

    洗涤次数与体积:通常建议洗涤3-5次,每次浸泡并摇动3-5分钟。使用足量的洗涤液。

    三、实验后:显色与结果分析

    底物使用与显色

    新鲜配制:尤其是HRP的底物,建议在使用前新鲜配制,以保证其活性。

    避光反应:某些底物(如ECL)对光敏感,显色反应需在暗室进行。

    控制反应时间:显色反应时间不宜过长,否则会导致背景过高。一旦达到理想的信号强度,应及时终止反应(对于ELISA)或进行成像(对于WB)。

    设立对照

    阴性对照:不加一抗(只加封闭液和二抗),用于评估二抗的非特异性结合背景。

    空白对照:不加一抗和二抗,用于评估底物自身的显色情况。

    阳性对照:使用已知阳性的样本,确保整个实验系统工作正常。

    总结

    成功使用酶标记检测抗体是一个系统性的优化过程,核心在于:

    选对(特异性)

    用好(稀释度、孵育条件)

    洗净(降低背景)

    控好(底物反应与对照)

    遵循以上注意事项,将能显著提高实验的可靠性、灵敏度和重复性。

    注:以上仅供参考,不作为实际数据,实验需严格遵循说明或咨询技术老师。

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